低强度脉冲场超声对充质干细胞的增殖作用研究
低强度脉冲场超声对充质干细胞的增殖作用研
究
来源:海南医学 作者:黄邓高;高元慧;王顺兰
发布于:2017-06-29 共4785 字
【摘要】 目的 运用低强度脉冲场超声(LIPUS)刺激促进人脂肪间充质干细胞(hASCs)增
殖,为临床干细胞体外高效增殖提供新方法。方法 通过 LIPUS 体外刺激 hASCs 细胞生长,采
用Scepter 2.0 手持细胞计数器进行细胞计数,运用荧光倒置显微镜观察细胞形态,运用流式细
胞仪检测细胞表面标志物,并进行干细胞临床前质量检测。结果 刺激组 50 mW/cm2 和60
mW/cm2 的LIPUS 刺激强度均能促进细胞增殖,60 mW/cm2 强度更显着,与对照组比较差异均
具有统计学意义(P<0.05);细胞倍增时间比对照组缩短,差异具有统计学意义(P<0.05),
刺激后刺激组细胞表面标志物无变化,增殖后干细胞质量检测符合标准要求。结论 LIPUS 刺激
可促进 hASCs 有效增殖,低强度脉冲场超声可作为干细胞体外扩增的新方法。
【关键词】 低强度脉冲场超声;人脂肪间充质干细胞;细胞增殖;质量检测。
低强度脉冲场超声(low-intensity pulsed ultra-sound,LIPUS)作为高频、小振幅和脉冲压力波传
递机械刺激经皮进入生物组织的一种非侵入性的治疗方式[1]
,目前被广泛应用于临床治疗。有报道,LIPUS 刺激既促进细胞 DNA 和蛋白质合成[2],又促进细
胞对钙的吸收[3].LIPUS 亦可提高细胞活性、细胞因子释放、基因表达、矿化率、Akt 信号、钾
流动、血管生成、腺苷酸环化酶活性和 TGF-β 合成的影响等[4-6],对再生医学具有重要意义。
脂肪间充质干细胞(adipose tissue-derived mesen-chymal stem cells,ASCs)由于其来源广、且容
易获得等特点,已经成为新一代组织工程种子细胞的来源之一。随着近年来干细胞研究领域的
快速发展,人们对干细胞生物学的了解越来越深入。人脂肪间充质干细胞(hASCs)因具有低
的免疫原性和强大的免疫调节特性,被用于同种异体的细胞移植等,治疗多种疾病和组织损伤
[7-8],促进了干细胞移植和再生医学的发展。
LIPUS 促进体内组织的修复,那么它应先促进体内细胞增殖然后再作用于损伤部位。然而,以
往的研究者未见运用 LIPUS 对hASCs 细胞增殖的研究,且促进细胞增殖机制未明确。本实验
中,我们运用 LIPUS 刺激促进 hASCs 增殖,增殖后干细胞质量检验符合要求,实验结果为
hASCs 体外高效扩增和产业化提供依据。
1 材料与方法
1.1 材料
1.1.1 细胞来源
人脂肪间充质干细胞购自广州赛业生物科技有限公司,按标准操作进行培养和传代[9-11].
1.1.2 仪器和试剂
人脂肪间充质干细胞完全培养基(广州赛业生物科技有限公司);0.25%胰酶消化液(Gibco
公司);流式抗体CD105-PE、CD73-PE、CD34-PE、CD14-PE、CD45-PE、HLA-DR-PE 和
HLA-ABC-PE (广州BD 公司);支原体培养和鉴定药敏检测试剂盒(中山市天祥电子生物传
感器有限公司);实时定量PCR 法检试剂盒(中山达安基因检测有限公司);细菌内毒素检
查试剂盒(厦门市鲎试剂实验厂有限公司);快速革兰氏染色试剂盒(珠海贝索生物技术有限
公司);细胞培养皿、12 孔板、50 mL 离心管(Grenier 公司);手持细胞计数仪(Merck
Millipore 公司);细胞扩增仪 SonaCell (加拿大Intelligent-Nano 公司);细胞培养箱(美国
Ther-mo );实时定量PCR 仪(瑞士罗氏公司);荧光倒置显微镜(日本 Olympus 公司)。
1.2 方法
1.2.1 SonaCell
细胞扩增仪 LIPUS 刺激 Sona-Cell (Jie Chen 提供)超声设备是基于生物学和临床研究的基础
上设置的:超声频率为 1.5 MHz,脉冲重复频率为 1 kHz,脉冲循环为 20%.超声平均强度可调整在
0~100 mW/cm2.仪器探头通过耦合剂紧贴培养皿底部进行辐照,本实验选用SonaCell 细胞扩增
仪40 mW/cm2、50 mW/cm2、60 mW/cm2 强度的 LIPUS 刺激[12]为刺激组,0 mW/cm2 强度为
对照组。取hASCs 第3代细胞 2×104 个的密度1 mL 接种于 12 孔板相应的孔中,细胞培养 24 h
后换液,然后使用SonaCell 设备的LIPUS 刺激部件于细胞培养箱中刺激,5 min/d,连续刺激 4d
(即细胞培养 24 h、48 h、72 h、96 h),第5天收集细胞并计数。细胞倍增时间(population
doubling time,PDT)计算方法:t=T/3.32 (lgN2-lgN1),T为对数期的持续增长时间,N1 和
N2 分别是对数增长开始和结束的细胞数量。做5组重复实验,对数据进行统计学分析。
1.2.2 细胞计数
运用 Scepter 2.0 手持细胞计数器进行细胞计数,用 0.25%胰酶-EDTA 消化液消化并收集细胞,
用适量的 D-PBS 重悬细胞,取150 ?L 细胞悬液至 1.5 mL 离心管中,使用Scepter 2.0 计数器的
60 ?L 感应探头插入液面以下。根据制造商的说明书进行操作。使用Scepter Software Pro 软件
进行数据分析,准确测量细胞的直径和每毫升体积内细胞的数量。
1.2.3 细胞形态观察
由于细胞生长至第 5 天(120 h)后,显微镜下观察不好分辨细胞的数量。本实验选择第 2次刺
激后 12 h (即细胞培养 60 h),对数生长期初始阶段,将刺激组和对照组细胞置于倒置显微镜
下观察,运用 Image-Pro Plus 软件拍照。
1.2.4 hASCs
免疫表型测定通过流式细胞仪测定hASCs 刺激组与对照组表面标记物
CD105、CD73、CD34、CD14、CD45、HLA-DR 和HLA-ABC 的表达情况。取消化待测细
胞,用 D-PBS 缓冲液清洗两次。调整细胞浓度为 3×105 个/mL,加入适量荧光标记的单克隆抗
体,室温,避光孵育 30 min.再清洗一次,重悬,上机检测,运用 BD FACSDIVA 软件进行分
析。
1.2.5 取第 3 代刺激后 hASCs 进行无菌试验、支原体检测、内毒素检测、革兰氏染色、人源特
定病毒检测
参照《干细胞制剂质量控制及临床前研究指导原则》和《中华人民共和国药典》2010 年版三部
附录进行[13-14].
1.3 统计学方法
应用 SPSS20.0 统计学软件包进行数据分析,采用 GraphPad Prism6 软件作图。首先对数据行正
态性检验,若不符合正态分布,通过正态性转换后再下一步处理。组内比较采用 One-
wayANOVA 检验方法,组间比较采用独立样本 t 检验,以 P<0.05 为差异有统计学意义。
2 结 果
2.1 LIPUS 刺激促进 hASCs 体外增殖 LIPUS 刺激 hASCs 体外增殖,第5 天计数结果显示刺激
组50 mW/cm2 和60 mW/cm2 强度都有促进细胞增殖的效果,其中60 mW/cm2 刺激强度最明
显,细胞倍增时间较对照组缩短,差异均有统计学意义(P<0.05),见图 1和图2.
摘要:
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低强度脉冲场超声对充质干细胞的增殖作用研究来源:海南医学作者:黄邓高;高元慧;王顺兰发布于:2017-06-29共4785字【摘要】目的运用低强度脉冲场超声(LIPUS)刺激促进人脂肪间充质干细胞(hASCs)增殖,为临床干细胞体外高效增殖提供新方法。方法通过LIPUS体外刺激hASCs细胞生长,采用Scepter2.0手持细胞计数器进行细胞计数,运用荧光倒置显微镜观察细胞形态,运用流式细胞仪检测细胞表面标志物,并进行干细胞临床前质量检测。结果刺激组50mW/cm2和60mW/cm2的LIPUS刺激强度均能促进细胞增殖,60mW/cm2强度更显着,与对照组比较差异均具有统计学意义(P...
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