肾小管上皮细胞分离实验研究

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肾小管上皮细胞分离实验研究
来源:学术堂 作者:周老师
发布于:2015-08-06 共3623 字
目前大量关于肾的毒理学、药物测试等研究需要肾小管上皮细胞株。但是,细胞株部分基因的
变异或缺失与正常细胞存在差异,原代细胞在表达正常细胞生理状态下则更显优势[1],因此寻
求一种有效的肾小管上皮细胞的原代培养尤为重要。目前多篇文献[1-7]对肾小管上皮细胞的原
代培养都有各自见解,本实验将其简化并加以改良,在文献的基础上[2]优化实验条件,寻找经
济材料以及合适的浓度以获得大量良好的肾小管上皮细胞。在试验中发现将第一次细胞换取液
可再次利用,仍有大量高纯度的肾小管上皮细胞贴壁且贴壁良好。
1 材料与方法
1.1 材料
实验动物:SD 大鼠,雄性,4~5 周龄(徐州医学院实验动物中心);昆明小鼠,4~5 周龄(徐
州医学院实验动物中心)。
1.2 主要试剂胎 牛 血 清(杭 州 四 季 青),DMEM-F12 1:1 培 养 基(Thermo Ⅰ ), 型胶原酶
( 美国 Sigma ),胰酶消化液,双抗(青霉素 - 链霉素溶液 100× ),兔抗人角蛋白
CK18(Bioss),SABC 免疫组化染色试剂盒(博士德生物),DAB 显色试剂盒(博士德生
物)。
1.3 试验方法
1.3.1 肾小管节段分离
大鼠和小鼠实验前均禁食 12 小时,进水自由。脱臼处死,75% 乙醇中浸泡 5min.在超净台中取
出肾,置于冷的含双抗的 PBS 溶液中,去除肾蒂和包膜,将肾皮质剪碎大小至 1mm3,PBS 洗
涤3 次后,放置 80 目不锈钢筛网上,用 50ml 灭菌注射器柄轻轻研磨,PBS 液充分清洗后的网
下液转移至 100 目不锈钢筛网中,将 100 目筛网倒置 PBS 冲洗取网上液。
取得的液体经 1500r/min 离心 8min, Ⅰ 弃去上清液在沉淀中加入型胶原酶,分别37℃振荡消化,
振荡消化时间分三组,分别为20min,25min,30min. 双倍体积DMEM-F12 培养基中和
后,1500r/min 离心 8min.
1.3.2 肾小管上皮细胞的原代培养及传代
在 上 述离心后的沉淀中 加 入含10% 胎牛血清的DMEM-F12 培养基,轻轻吹打混匀。
接种到25mL 培养瓶中。培养瓶静置于 37℃ 5% 的CO2 培养箱中培养。24h 后补加培养
基。72h 后首次换液。之后隔天换液。原代培养 4~6 天,细胞贴满瓶底,用胰蛋白酶消化并传
代培养。
1.3.3 首次换液后废液的有效利用
72h 首次换液时,将废液至于新的培养瓶中,添加适当的培养基,静置于 37℃ 5% 的CO2 培养
箱中培养。视细胞贴壁状态可于 48h 半换液,72h 全换液。
1.3.4 肾小管上皮细胞的鉴定 1.3.4.1 倒置显微镜下对细胞的形态及生长进行观察 1.3.4.2 免疫细
胞化学法(SABC 法)细胞爬片后,PBS 轻轻冲洗。4% 多聚甲醛固定 60min.
吸去多聚甲醛后空气干燥 5min, 加入30%H2O2 纯甲醇(1:50 )混合液浸泡 30min,灭活内源性过
氧化物酶,PBS 冲洗;加 5%BSA 封闭液,室温条件 20min, 吸去多余液体;加兔抗人角蛋白
CK18(1:200),PBS 作为阴性对照。37℃ 下孵育 1h,PBS 洗涤 3 次。加入生物素化山羊抗兔
IgG (博士德生物)室温 20min,PBS 洗涤 3 次,加 SABC 37℃ 反应 20min, 洗片,使用DAB 试
剂盒(AR1002)显色,苏木素轻度复染,中性树胶封片。
2 结果
2.1 SD 大鼠和昆明小鼠肾小管上皮细胞分离生长和传代的比较
SD 大鼠刚分离的以肾小管节段以及单个游离肾小管上皮细胞,在倒置显微镜下圆形透亮,体
积较大,强折光性好。( 图1)12h 后部分细胞开始贴壁,以肾小管节段周围聚集密集。24h
后细胞大量贴壁且有少量上皮样细胞爬出,72h 细胞紧密衔接呈典型鹅卵石铺路样,折光性
好。(图2)SD 大鼠传代至第二代时开始有细胞漂浮,传代到第三代时大量凋亡。昆明小鼠
刚分离的肾小管以肾小管节段居多,形态与大鼠相似。(图3 )贴壁速度比SD 大鼠略慢,但
生长速度快,培养 72h 已长满瓶底。(图4)传代至第三代时依旧有大量细胞紧贴瓶底。
2.2 胶原蛋白不同时间的消化结果
SD 大鼠分离出的 100 目网上液,37℃ 环境下,胶原酶消化 20min 肾小管节段较多,于 36h 已
开始贴壁,72h 后贴壁达 45%,生长状态较好,纯度较高。细胞传代至第二代细胞活性降低,细
胞开始凋亡漂浮。胶原酶消化 25min 肾小管节段以及游离细胞明显增多,24h 有部分细胞贴
壁,原代培养 36-72 h 有上皮细胞从周边长出呈岛屿状,(图5)细胞传代到第三代开始有少
量细胞漂浮,生长缓慢。胶原酶消化 30min 游离肾小管上皮细胞居多,贴壁生长均缓慢。传代
到第二代细胞呈老化状态。
2.3 首次细胞换取液中肾小管上皮细胞的培养和传代
昆明小鼠培养 72h 后,首次细胞换取液中存有大量肾小管节段和游离肾小管上皮细胞,形态与
上述肾小管上皮细胞相似,还有少许杂质。(图6 )换取液培养 12h 后细胞开始贴壁,生长状
摘要:

肾小管上皮细胞分离实验研究来源:学术堂作者:周老师发布于:2015-08-06共3623字目前大量关于肾的毒理学、药物测试等研究需要肾小管上皮细胞株。但是,细胞株部分基因的变异或缺失与正常细胞存在差异,原代细胞在表达正常细胞生理状态下则更显优势[1],因此寻求一种有效的肾小管上皮细胞的原代培养尤为重要。目前多篇文献[1-7]对肾小管上皮细胞的原代培养都有各自见解,本实验将其简化并加以改良,在文献的基础上[2]优化实验条件,寻找经济材料以及合适的浓度以获得大量良好的肾小管上皮细胞。在试验中发现将第一次细胞换取液可再次利用,仍有大量高纯度的肾小管上皮细胞贴壁且贴壁良好。1材料与方法1.1材料实验动...

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